Actividad antagónica in vitro de Trichoderma sp. frente a Fusarium sp.
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Publicado:
Dec 1, 2020
Palabras clave:
Trichoderma sp, Fusarium sp, antagonista
Contenido principal del artículo
Resumen
Las especies de Fusarium sp causan enfermedades fúngicas que afectan raíz, tallo y hoja en diferentes cultivos. Por otra parte, los hongos antagonistas como Trichoderma sp. constituyen una alternativa para el control de hongos fitopatógenos, por lo cual, se evaluó la actividad antagónica in vitro de Trichoderma sp sobre el crecimiento de Fusarium sp., mediante un ensayo de confrontación dual cada 24 horas en medio Agar Malta. Para los ensayos, se utilizó una cepa de Trichoderma sp aislada de hojas de cacao, determinándose el efecto inhibitorio de la misma sobre el crecimiento de Fusarium sp. Como resultado se obtuvo que la cepa de Trichoderma sp inhibió significativamente el crecimiento del hongo fitopatógeno Fusarium sp.
Detalles del artículo
Cómo citar
Urgelles CardozaI., AbreuA., Abreu RomeroN., Díaz RodríguezA., & Fernández MauraY. (2020). Actividad antagónica in vitro de Trichoderma sp. frente a Fusarium sp. Cub@: Medio Ambiente Y Desarrollo, 20(39). Recuperado a partir de https://cmad.ama.cu/index.php/cmad/article/view/262
Sección
Artículos
Citas
Bailey B, Bae H, Stem M, Crozier J,Thomas S, Samuels G, et al, 2008 Antibiosis, mycoparasitism, and colonization success for endophyticTrichoderma isolates with biological control potential in Theobroma cacao. Biological Control 46:24–35.
Verma M, Brar S, Tyagi RD, Surampalli R, Valéro R. 2007. Antagonist fungi, Trichodermas pp: Panoply of biological control. Biochemical Engineering Journal 37:1–20.
Hernández A, Ruíz Y, Acebo Y, Miguélez Y, Heydrich M. 2014. Antagonistas microbianos para el manejo de la pudrición negra del fruto en Theobroma cacao L. Estado actual y perspectivas de uso en Cuba. Revista de Protección Vegetal 29(1):11–19.
De la Cruz M, Ortíz C, Bautista C, Ramírez J, Ávalos N, Cappello S, et al. 2015. Diversidad de Trichoderma spp., en el agroecosistema cacao del estado de Tabasco, México. Revista Mexicana de Biodiversidad 86:947–61.
Samuels GJ. 2006. Trichoderma: systematics, thesexual state, and ecology. Phytopathology96:196–206.
Rolando, Á., R. Carrión1, R. Nina, H. Smeltekop, J. Almanza, M. Lozamurguia, A.C. MIchel-Aceves, et al. 2013. Eficiencia biológica de cepas nativas de Trichoderma spp., en el control de Sclerotiumrolfsii Sacc., en cacahuate. Avances de InvestigaciónAgropecuaria 28: 89–107.
Sánchez-Fernández, R., B. Sánchez Ortiz, Y. Sandoval-Espinosa, A. Ulloa Benítez., B. Armendáriz-Guillén, M. García-Méndez., and M. Macías Rubalcava. 2013. Hongos endófitos: fuente potencial de metabolitos secundarios bioactivos con utilidad en agricultura y medicina. Tip 16:132–146.
Martínez Álvarez, P., F.M. Alves Santos, and J.J. Diez. 2012. In vitro and in vivo interactions between Trichodermaviride and Fusarium ncircinatum. Silva Fennica 46: 303–316.
Martínez Álvarez, P., R.A. Fernández González, A.V. Sanz Ros, V. Pando, and J.J. Diez. 2016. Two fungal endophytes reduce the severity of pitch canker disease in Pinus radiate seedlings. Biological Control 94: 1–10.
Agrios, N. G. 2010. Fitopatología. 2ª ed. Limusa. México, D. F. 838 p.
Ríos ELV, 2014. Caracteres principales, ventajas y beneficios agrícolas que aporta el uso de Trichoderma como control biológico. Revista Científica Agroecosistemas.; 2(1).
Pérez-Torres E, Bernal-Cabrera A, Milanés-Virelles P, Sierra-Reyes Y, Leiva-Mora M, Marín-Guerra S, et al, 2018. Eficiencia de Trichoderma harzianum (cepa a-34) y sus filtrados en el control de tres enfermedades fúngicas foliares en arroz. Bioagro.; 30(1):17-26.
Martínez B, Infante D, Reyes Y. Trichoderma spp. y su función en el control de plagas en los cultivos. Revista de Protección Vegetal. 2013; 28(1):1-11
Polanco, Y. (2016). Biocontrol de Fusarium sp. por Trichoderma spp. En Theobroma cacao L en condiciones in vitro y vivero. (Tesis de pregrado).Universidad de Carabobo. Venezuela
Vargas, R. (2014). Antagonismo de Trichoderma koningiopsis y Trichoderma harzianum sobre Fusarium oxysporumf. sp. cepae y Phomaterrestris in vitro. (Tesis de pregrado). Universidad Nacional de San Agustín. Arequipa,Perú.
Ezziyyani M. Biocontrol mediante una combinación de microorganismos antagonistas. Tesis Doctoral. Universidad de Murcia-España. 2004.
Evans, H., K. Holmes and A. Reid. 2003. Phylogeny ofthe frosty pod rots pathogen of cocoa. Plant Pathology 52(4): 476-485.
Ezziyyani, M. 2004. Biocontrol de Phytophthoracapsici en pimiento, con combinación de bioantagonistas. Tesis Doctoral. Universidad de Murcia. Facultad de Biología, Murcia, España. 107 p.
Hernández-Martínez, R. y Valenzuela-Solano, C. 2011. Enfermedades de la madera en la costa de Ensenada, Baja California. CICESE-INIFAP. Folleto técnico No. 1. 22 p.
John, P. R., Tyagi, D. R., Prévost, D., Brar, K. S., Pouleur, S., and Surampalli, Y. R. 2010. MycoparasiticTrichodermaviride as a biocontrol agent against Fusarium oxysporum f. sp. adzuki and Pythiumarrhenomanes and as a growth promoter of soybean. Crop Protection. 29: 1452-1459. Doi:10.1016/j.cropro.2010.08.004
Howell, C. (2003). Mechanisms employed by Trichoderma species in the biological control of plant diseases: the history and evolution of current concepts. PlantDisease, 87, pp.4-10.
Rivas M, Pavone D. 2010. Diversidad de Trichoderma spp., en plantas de Theobroma cacao L. del Estado Carabobo, Venezuela, y su capacidad de biocontroladora sobre Crinipellis perniciosa (STAHEL) SINGER. Interciencia 35(10): 777–783.
Hernández, A., Bautista, S., Velázquez, M. & Hernández, A. (2007). Uso de microorganismos antagonistas en el control de enfermedades pos cosecha en frutos. Rev Mex Fitopatología 25: 66-74.
Verma M, Brar S, Tyagi RD, Surampalli R, Valéro R. 2007. Antagonist fungi, Trichodermas pp: Panoply of biological control. Biochemical Engineering Journal 37:1–20.
Hernández A, Ruíz Y, Acebo Y, Miguélez Y, Heydrich M. 2014. Antagonistas microbianos para el manejo de la pudrición negra del fruto en Theobroma cacao L. Estado actual y perspectivas de uso en Cuba. Revista de Protección Vegetal 29(1):11–19.
De la Cruz M, Ortíz C, Bautista C, Ramírez J, Ávalos N, Cappello S, et al. 2015. Diversidad de Trichoderma spp., en el agroecosistema cacao del estado de Tabasco, México. Revista Mexicana de Biodiversidad 86:947–61.
Samuels GJ. 2006. Trichoderma: systematics, thesexual state, and ecology. Phytopathology96:196–206.
Rolando, Á., R. Carrión1, R. Nina, H. Smeltekop, J. Almanza, M. Lozamurguia, A.C. MIchel-Aceves, et al. 2013. Eficiencia biológica de cepas nativas de Trichoderma spp., en el control de Sclerotiumrolfsii Sacc., en cacahuate. Avances de InvestigaciónAgropecuaria 28: 89–107.
Sánchez-Fernández, R., B. Sánchez Ortiz, Y. Sandoval-Espinosa, A. Ulloa Benítez., B. Armendáriz-Guillén, M. García-Méndez., and M. Macías Rubalcava. 2013. Hongos endófitos: fuente potencial de metabolitos secundarios bioactivos con utilidad en agricultura y medicina. Tip 16:132–146.
Martínez Álvarez, P., F.M. Alves Santos, and J.J. Diez. 2012. In vitro and in vivo interactions between Trichodermaviride and Fusarium ncircinatum. Silva Fennica 46: 303–316.
Martínez Álvarez, P., R.A. Fernández González, A.V. Sanz Ros, V. Pando, and J.J. Diez. 2016. Two fungal endophytes reduce the severity of pitch canker disease in Pinus radiate seedlings. Biological Control 94: 1–10.
Agrios, N. G. 2010. Fitopatología. 2ª ed. Limusa. México, D. F. 838 p.
Ríos ELV, 2014. Caracteres principales, ventajas y beneficios agrícolas que aporta el uso de Trichoderma como control biológico. Revista Científica Agroecosistemas.; 2(1).
Pérez-Torres E, Bernal-Cabrera A, Milanés-Virelles P, Sierra-Reyes Y, Leiva-Mora M, Marín-Guerra S, et al, 2018. Eficiencia de Trichoderma harzianum (cepa a-34) y sus filtrados en el control de tres enfermedades fúngicas foliares en arroz. Bioagro.; 30(1):17-26.
Martínez B, Infante D, Reyes Y. Trichoderma spp. y su función en el control de plagas en los cultivos. Revista de Protección Vegetal. 2013; 28(1):1-11
Polanco, Y. (2016). Biocontrol de Fusarium sp. por Trichoderma spp. En Theobroma cacao L en condiciones in vitro y vivero. (Tesis de pregrado).Universidad de Carabobo. Venezuela
Vargas, R. (2014). Antagonismo de Trichoderma koningiopsis y Trichoderma harzianum sobre Fusarium oxysporumf. sp. cepae y Phomaterrestris in vitro. (Tesis de pregrado). Universidad Nacional de San Agustín. Arequipa,Perú.
Ezziyyani M. Biocontrol mediante una combinación de microorganismos antagonistas. Tesis Doctoral. Universidad de Murcia-España. 2004.
Evans, H., K. Holmes and A. Reid. 2003. Phylogeny ofthe frosty pod rots pathogen of cocoa. Plant Pathology 52(4): 476-485.
Ezziyyani, M. 2004. Biocontrol de Phytophthoracapsici en pimiento, con combinación de bioantagonistas. Tesis Doctoral. Universidad de Murcia. Facultad de Biología, Murcia, España. 107 p.
Hernández-Martínez, R. y Valenzuela-Solano, C. 2011. Enfermedades de la madera en la costa de Ensenada, Baja California. CICESE-INIFAP. Folleto técnico No. 1. 22 p.
John, P. R., Tyagi, D. R., Prévost, D., Brar, K. S., Pouleur, S., and Surampalli, Y. R. 2010. MycoparasiticTrichodermaviride as a biocontrol agent against Fusarium oxysporum f. sp. adzuki and Pythiumarrhenomanes and as a growth promoter of soybean. Crop Protection. 29: 1452-1459. Doi:10.1016/j.cropro.2010.08.004
Howell, C. (2003). Mechanisms employed by Trichoderma species in the biological control of plant diseases: the history and evolution of current concepts. PlantDisease, 87, pp.4-10.
Rivas M, Pavone D. 2010. Diversidad de Trichoderma spp., en plantas de Theobroma cacao L. del Estado Carabobo, Venezuela, y su capacidad de biocontroladora sobre Crinipellis perniciosa (STAHEL) SINGER. Interciencia 35(10): 777–783.
Hernández, A., Bautista, S., Velázquez, M. & Hernández, A. (2007). Uso de microorganismos antagonistas en el control de enfermedades pos cosecha en frutos. Rev Mex Fitopatología 25: 66-74.